所述外显子序列为第3外显子序列。进一步地，在本发明的一些实施方案中，利用cre-loxp基因敲除技术敲除gm20541基因上的第3外显子序列。上述敲除策略是采用cre-loxp敲除技术敲除gm20541基因。但在其他的实施例中，实现基因敲除的技术手段有很多，例如crispr/cas9技术、人工核酸酶介导的锌指核酸酶技术(zinc-fingernucleases，zfn)、转录因子样效应物核酸酶技术(transceriptionactivator-likeeffectornucleases,talen)等。因此，在其他的实施例中采用crispr/cas9技术或其他的技术手段敲除gm20541基因，也是属于本发明的保护范围。进一步地，在本发明的一些实施方案中，所述目标动物为哺乳动物。进一步地，在本发明的一些实施方案中，所述哺乳动物选自小鼠、大鼠、狗、猪、猴以及猿中的任意一种。需要说明是，本发明所述的目标动物并不限于上述的动物，其他类型的哺乳动物也是可行，无论选用何种动物，只要是具有gm20541基因或其同源基因的动物，均可作为本发明所述构建方法中的目标动物，在其前体细胞中敲除gm20541基因，使其表现出视网膜色素变性性疾病特征，作为视网膜色素变性疾病模型，这也是属于本发明的保护范围。第二方面。橄榄油联合酒精致肝硬化门脉高压大鼠模型。小鼠动物模型手术
根据gm20541的cdna序列设计引物：gm20541-cdna-f：5’-tcggtctcatcttcattccc-3；gm20541-cdna-r：5’-ggaaggctctgttccggtat-3；(g)以提取的cdna为模板，进行rt-pcr。扩增后进行电泳。结果见图4中b，可以看出，通过rt-pcr方法检测gm20541在gm20541基因敲除纯合子小鼠的视网膜中表达量降低。图4的b中ctrl是指野生型对照，sixko是指gm20541基因敲除纯合子小鼠；gm20541rnalevel是指rna表达水平相对变化，以野生型表达水平为1。实施例3对4月龄的gm20541基因敲除纯合子小鼠进行erg视力检测：1暗适应动物应整夜暗适应，环境应做到没有光线；2次日麻醉：称重，腹腔内注射；宜深度麻醉；3动物固定及散瞳：麻醉完成后，在暗红光照明下将小鼠用胶带固定在动物试验平台的前方：需保证小鼠正"趴"，即相对于闪光刺激器的刺激口，双眼高度一致，充分暴露，滴加散瞳剂。4电极安装：将视网膜电图仪(espionvisualelectrophysiologysystem,diagnosysllc,littleton,ma,usa)预热后，在耳夹电极涂上导电膏，夹尾巴，插入放大器“地”接口；双头的针电极插入后颈皮(大约在两耳中间)，同时接两个通道的“负”接口；金环电极夹在动物实验平台的电极支架上，仔细调整其角度。上海脑定位动物模型建模LPS脂多糖致脓毒血症肝损伤小鼠模型。
扩增产物为。其中a2,3,6,9,10,b1为阳性。扩增3’端长臂使用引物：neof:5’-cgccttcttgacgagttcttctga-3’；gm3’lrr:5’-ggtgcttgagtagtgttgaatctcagtggacca-3’结果见图3中b，扩增产物为。其中：a2,3,6,9,10,b6,9,es1g,es2g为阳性杂合子，+/+为野生型对照。5将步骤4得到的杂合子小鼠动物与转基因鼠flper鼠交配繁育，得到gm20541基因条件性敲除杂合子小鼠；6将步骤5得到的gm20541基因条件性敲除杂合子小鼠相互交配繁育，得到gm20541基因条件性敲除纯合子小鼠；7将步骤6得到的gm20541基因条件性敲除纯合子动物与转six3-cre基因动物交配，得到视网膜前体细胞gm20541基因敲除小鼠。转基因鼠flper鼠购自美国捷克森实验室(品系名称：(rosa)26sortm1(flp1)dym/rainj)。six3-cre转基因小鼠(mgi：3574771)由美国德克萨斯大学安德森中心赠送。six3是一个前脑腹侧和视网膜前体细胞的标志性转录因子，其特异性驱动cre基因在视网膜前体细胞表达，cre蛋白可以进入细胞核，识别基因组上loxp位点，实现基因敲除。基因敲除小鼠鉴定步骤：对上述视网膜前体细胞敲除gm20541基因的小鼠的基因型鉴定，操作如下：(1)剪小鼠尾梢少许组织样本，置于干净的；(2)在离心管中加入100μl裂解液。
我们知道WB实验步骤繁琐，一次实验历时也不短，从提蛋白到显影结束可能要三天，我们就讲一下这里面的一些关键环节。一、蛋白提取及变性1、提取蛋白很多经验丰富的WB实验者都深有体会，蛋白提取是影响结果重要的环节之一。该过程重要的是防降解和保证蛋白浓度不要太低。防降解主要有两点，一是裂解前注意保持样品处于低温环境中，二是裂解时加入足够的蛋白酶抑制剂。我们习惯先用冰冷的PBS做心脏的体循环灌注，然后冰上取脑，分离各脑区(嗅球，皮层，海马，中脑，小脑，延髓，丘脑，纹状体)后置于，用液氮速冻后转移至-80度冰箱长期保存。接着是保证蛋白浓度，即要加入适量的裂解液，加太少会使蛋白提取不充分，加太多会让蛋白浓度太低，一般经验是这样的，细胞样品例如一个六孔板的细胞加60微升的裂解液，动物组织的话每毫克组织加10微升裂解液。还要加上超声破碎处理，具体方案见讨论部分。如果没有超声破碎仪，那就用1毫升注射器不断抽吸，冰上反复抽吸1分钟左右，注意不要产生过多气泡。(需要灌注取材的视频可以私聊获取，由于文件过大，又比较血腥，不宜直接放到文章里。)2、蛋白变性加入上样缓冲液后100摄氏度煮10分钟，这里的上样缓冲液有两种可选。由于卵巢早衰的病因多种多样,如自身免疫功能异常、遗传因素、代谢因素、化疗、放疗及等。
疾病神经系统疾病模型动物抗抑郁对脑突触体摄取5-HT、NA、DA的抑制作用（样品筛选、IC50测定）大鼠强迫游泳试验（大/小鼠，Noduls软件、视屏分析）大/小鼠小鼠悬尾试验（Noduls软件、视屏分析）小鼠5-羟色胺增强试验小鼠利血平诱导眼睑下垂试验小鼠育亨宾毒性增强试验小鼠高剂量阿扑拮抗小鼠大鼠慢性轻度不可预见性刺激（CUMS）模型大鼠新环境进食抑制实验大/小鼠小鼠脑内单胺氧化酶MAO-A、MAO-B活性测定小鼠对新生大鼠海马神经细胞的保护作用（谷氨酸损伤、过氧化氢损伤、缺糖缺氧损伤、损伤等）新生大鼠对SH-SY5Y细胞合成分泌BDNF的作用SH-SY5Y细胞抗惊厥育亨宾毒性增强试验小鼠戊四唑惊厥小鼠荷包牡丹碱惊厥小鼠印防己惊厥小鼠抗焦虑与戊巴比妥类药物的协同作用小鼠对巴比妥阈下剂量的影响小鼠再入睡试验小鼠旷场实验（大/小鼠，全程摄像监控、软件处理）大/小鼠大鼠高架十字迷宫法（全程摄像监控、软件处理）大鼠大鼠穿梭箱法（全程摄像监控、软件处理）大鼠抗帕金森氏症抗帕金森氏症6-羟多巴胺致大鼠帕金森病模型大鼠MPTP模型（双侧损毁PD模型）大/小鼠氧化震颤素致颤模型大/小鼠疼痛。卵巢切除致骨质疏松大鼠模型。小鼠动物模型手术
高脂饲料致高脂血症大鼠模型。小鼠动物模型手术
静置25分钟后把酒精倒干，用吸水纸吸出多余的酒精，然后配压缩胶，同样的操作，关键是梳子要插得快，要小心梳子下产生气泡，然后静置30分钟。如果是当天跑胶，我会等上层胶凝2个小时再用，但要注意防干燥缩水，可以在一个小时的时候沿着梳子上缘加点电泳液。所以我一般提前一晚制胶，泡于纯水或者电泳液里置于4度冰箱暂存。三、蛋白电泳1、上样前准备把胶组装到电泳芯上，注意密闭性(否则漏液)，如果内槽漏液就不是匀强电场了，条带可能就不是一条直线。然后内槽倒满电泳液，拔梳子，这一步要小心，梳子要两边一起缓缓往上拔出，然后观察泳道内有无脱落的胶粒或者胶丝，有的话用1毫升注射器吸出。然后从冰箱取出蛋白样品，解冻。准备振荡器。2、上样和电泳注意，上样后蛋白会开始慢慢在胶中弥散，所以上样越快越好。我习惯先上蛋白Marker,再上蛋白样品，蛋白上样前确保样品完全解冻和充分振荡(推荐使用振荡器振荡)，吸的时候没有拉丝即可，建议上样分钟把样品从冰上取出来，不然样品中SDS可能会结晶析出，从而影响电泳效果。上层胶80V25分钟，下层胶120V65分钟。四、转膜1、转膜前准备我会在电泳结束0分钟准备，把转膜液配好置于4度冰箱预冷，然后裁膜，准备转膜装置。小鼠动物模型手术
