厦门南昌鼠尾胶原

鼠尾Ⅰ型胶原：组装液的配置：1.50mmol/L甘氨酸+200mmol/L氯化钾100mL，用1mol/L氢氧化钠调节酸碱度至9.2。2.胶原纤维的重构吸取胶原10μL至小培养皿中，倒入0.5mL自组装液，室温放置20min。予自组装液自组装24h。吸取0.05%戊二醛2mL至小培养皿中，将自组装24h的胶原浸泡在戊二醛中。然后将胶原经去离子水、50%乙醇、100%乙醇依次漂洗后进行TEM观察。3.生物矿化形成仿生骨材料静滴配置钙磷矿化液将25mL钙液(10mmol/L二水氯化钙+150mmol/L氯化钠+50mmol/L三羟甲基氨基甲烷+0.02%三氮化钠)倒入烧杯中，滴入聚丙烯(PAA)至浓度350μg/mL；滴加1mol/L的氯化氢，调节酸碱度至7.4，然后缓慢滴入25mL磷液(6mmol/L磷酸氢二钠)，约16滴/min。鼠尾胶原醋酸溶解：将鼠尾胶原加入到0.1M的醋酸中。厦门南昌鼠尾胶原

鼠尾胶原备用胶凝程序：1）在冰上放置以下物品：胶原蛋白I、无菌10×PBS、无菌蒸馏水、无菌1MNaOH。2）确定胶原蛋白I待使用溶液所需的较终浓度的体积。3）在冰上放置无菌管以收存胶原蛋白I。4）在无菌条件下执行以下步骤。4.1加入10×PBS（终体积/10）mL4.2计算要使用的胶原蛋白I的体积（不要添加到管中直到步骤4.6为止）终体积x终胶原蛋白I浓度（mg/mL）。4.3向10×PBS溶液中加入（要加入的胶原体积×0.023）mL的无菌冰冷1MNaOH。4.4向4.3溶液中加入下述体积的无菌冰冷蒸馏水：添加蒸馏水体积=V（终）—V（胶原蛋白）—V(10×PBS）—V（1MNaOH）4.5混合管中的物质并放入冰中。4.6加入胶原蛋白I并计算体积，混匀，冰上备用。5）胶原蛋白I溶液可立即使用或在冰上放置2-3小时。6）使用时，无菌条件下将溶液加入到细胞培养装置中37°C凝胶30min。徐州珠海鼠尾胶原制备鼠尾胶原（两个同学一组操作）。

鼠尾Ⅰ型胶原：选择适当的骨修复材料是治好骨缺损的中心环节。目前，临床上常用的有人工骨移植、自体骨移植和同种异体骨移植。其中，人工骨材料多为磷酸三钙、半水硫酸钙等含有钙和磷的无机矿物材料[1-2]，由于不含自体骨组织中的有机大分子Ⅰ型胶原蛋白，其临床疗效远远低于自体骨组织。但是，自体骨移植和同种异体骨移植均来源于人类自身骨组织，数量有限，难以满足临床需要。因此，研发与人类自体骨组织化学成分和分子结构相近的仿生骨材料，成为全世界骨组织工程学者孜孜以求的目标。由于天然骨组织是Ⅰ型胶原蛋白和羟基磷灰石钙生物矿化的产物，在分子结构上，羟基磷灰石钙晶体是以Ⅰ型胶原纤维为模板，呈片状镶嵌在胶原纤维分子间隙，沿着胶原纤维的长轴纵向矿化生长。本研究仿生天然骨组织的分子结构，酸解提取鼠尾肌腱的Ⅰ型胶原蛋白，重构形成Ⅰ型胶原纤维，然后将Ⅰ型胶原纤维放置在矿化液中模拟人体内骨生物矿化，通过透射电子显微镜(TEM)和电子衍射观察羟基磷灰石钙晶体在胶原纤维内部的骨生物矿化。论鼠尾胶原能促进毛细胞贴壁，涂布鼠尾胶原有利于膜片钳实验的长时程记录，并且制作简便，成本低廉。

鼠尾胶原的生物矿化和TEM观察：果冻样Ⅰ型胶原蛋白胶体初始浸泡在矿化液中时呈微白色；矿化2d后，胶体的颜色逐渐加深至乳白色；矿化6d后，随着羟基磷灰石晶体矿化长入胶原纤维内部，胶体颜色加深至纯白色，并在胶体表面沉积了一层薄薄的羟基磷灰石钙晶体，予镊子夹起，其表层羟基磷灰石钙晶体破碎散落。TEM表征显示：矿化2d后，Ⅰ型胶原纤维的明暗相隔周期性条纹结构逐渐模糊，羟基磷灰石钙前体渗入胶原纤维内部，胶原纤维部分矿化，沿着胶原纤维生长，忖度变深；矿化6d后，Ⅰ型胶原纤维的明暗相隔D-Band结构完全消失，胶原纤维内部可以看到黑色羟基磷灰石晶体，嵌入胶原纤维纵向生长。当鼠尾Ⅰ型胶原纤维完全矿化时，由于整条胶原纤维都被羟基磷灰石钙晶体占据，胶原纤维呈现黑色，选区衍射斑图符合羟基磷灰石表征。不断搅拌至溶液中白色的絮状物不再析出。

I型鼠尾胶原是借鉴NavneetaRajan,JasonHabermehl法，经过乙酸抽提、离心、灭菌、透析等步骤制备得到的高纯度、高活性胶原蛋白，属于医药级别产品，可用于包被细胞培养器皿（单分子层包被），适合多种类型细胞的贴壁如肝脏细胞、神经节细胞、胚胎细胞、肌细胞、肺细胞、神经鞘细胞等。I型胶原蛋白包被细胞培养板，规格为6/24孔板，表面经I型胶原蛋白包被，可以很好的降低蛋白质的吸附。使用这种细胞培养板培养细胞，可以获得良好的细胞贴壁率，细胞增殖速度快，形态均一，细胞培养成功率高。期间不断搅拌，防止冻结成块，得到胶原溶胀液。厦门鼠尾胶原进货价

为了尽可能减少对动物的伤害和方便试验人员的操作，剪下一小段鼠尾是一个不错的选择。厦门南昌鼠尾胶原

鼠尾胶原在心肌细胞氧化损伤中的保护作用：胶原蛋白具有抗氧化作用,但既往在实验室主要将鼠尾胶原用于促进细胞贴壁和支架构建,对于其抗氧化作用目前尚无相关研究。目的:探讨鼠尾胶原对过氧化氢导致离体心肌细胞氧化损伤的保护作用。方法:将原代培养的SD大鼠乳鼠心肌细胞随机接种到铺有鼠尾胶原的培养皿(实验组)和普通培养皿(对照组)中,并且均用0,10,100μmol/LH2O2诱导。24h后,以电子显微镜观察各组乳鼠心肌细胞的形态,应用MTT比色法检测心肌细胞存活率,TUNEL法检测心肌细胞凋亡形态,流式细胞技术检测心肌细胞凋亡率,黄嘌呤氧化酶法检测超氧化物歧化酶活力,硫代巴比妥比色法检测丙二醛水平,Western-Blot检测凋亡蛋白Bax、Bcl-2的表达。结果与结论:两组培养皿中,随着过氧化氢浓度的增高,均可见细胞凋亡状态明显加重,细胞存活率及细胞内过氧化氢活力明显下降,细胞凋亡率及细胞内丙二醛水平明显增高,Bcl-2/Bax比值明显降低,呈剂量依赖性。厦门南昌鼠尾胶原