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外泌体的提取主要包括以下几种方式。一是超速离心法，这是目前外泌体提取较常用的方法。此种方法得到的外泌体量多，但是纯度不足，电镜鉴定时发现外泌体聚集成块，由于微泡和外泌体没有非常统一的鉴定标准，也有一些研究认为此种方法得到的是微泡不是外泌体。二是过滤离心，这种操作简单、省时，不影响外泌体的生物活性，但同样存在纯度不足的问题。三是密度梯度离心法，用此种方法分离到的外泌体纯度高，但是前期准备工作繁杂，耗时，量少。外泌体检测作为一种新型的液体活检热点技术已被许多临床科研机构普遍地应用于一些病症和疾病的无创诊断。外泌体的提取、分离方法：开发高效、快速、稳定，并且保持外泌体结构和生物功能完整性的方法。开封外泌体提取试剂供应商

外泌体的提取、分离方法：尺寸排阻色谱法和超滤法；尺寸排阻色谱法是利用分子筛理论，较初是根据蛋白质分子大小分离蛋白质的色谱技术。该方法的主要优点是不需要很大的离心力，从而保证了外泌体的完整性。Mol等[13]对比超高速离心和尺寸排阻色谱法得到的外泌体蛋白，结果显示，后者得到的外泌体的蛋白丰度高于前者。这些基于过滤或尺寸排阻色谱的新方法为外泌体大规模的生产和临床应用提供了可能。超滤也是根据外泌体的尺寸将其分离出来的一种方法，超滤一般被认为是外泌体分离过程中的一个准备过程，通过超滤除去大分子和小分子的蛋白质。不过连续的超滤可以分离出外泌体，和超高速离心相比，超滤不需要特殊的设备就可以较短时间内分离出外泌体。但是，超滤膜对外泌体的黏附作用会降低外泌体的产量，并且超滤过程中施加的外力可能会使外泌体变形或者破裂。徐州外泌体提取试剂外泌体的提取方法：超滤离心。

外泌体的提取、分离方法：梯度密度离心法。研究发现，外泌体的密度在1.1~1.19kg·L-1之间，因此，可以采用密度梯度离心法来分离外泌体。该方法是将超速离心结合蔗糖密度梯度或蔗糖垫结合，原理是先除去非囊泡物质，再通过梯度密度浓缩提取外泌体，该方法可以得到相对较为纯净的外泌体。传统的梯度密度方法通常需要离心16h，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分离出某些确切囊泡，因此，该方法可能不足以沉淀所有的外泌体。如果离心时间不充足，污染物质可能和外泌体保持在相同的密度层，特别是这个密度范围又比较宽。

外泌体的提取方法：1.超速离心法（差速离心）。超离法是较常用的外泌体纯化手段，采用低速离心、高速离心交替进行，可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单，获得的囊泡数量较多而广受欢迎，但过程比较费时，且回收率不稳定（可能与转子类型有关），纯度也受到质疑；此外，重复离心操作还有可能对囊泡造成损害，从而降低其质量。2.密度梯度离心。在超速离心力作用下，使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层，是一种区带分离法。通过密度梯度离心，样品中的外泌体将在1.13-1.19g/ml的密度范围富集。此法获得的外泌体纯度较高，但步骤繁琐，耗时，对离心时间极为敏感。人尿液来源细胞的外泌体的获取方法，是首先分离培养人尿液来源细胞并收集培养基。

外泌体可通过流式、WB（检测指标有CD9,CD63,CD81）、电镜观察、NTA粒径追踪等手段检测，普遍应用于药物载体、疾病诊断marker、精细医疗、一些病症治病等方面研究。由于外泌体直径小，样本含量低，提取十分困难。已有的外泌体分离方式有密度梯度离心、超滤离心法、免疫磁珠抗体捕获、商用试剂盒等。但到目前为止，仍没有一种提取方法能同时保证外泌体的含量、纯度以及生物活性。外泌体是细胞间进行物质运输和信息交流的重要工具，可以通过调节免疫功能促进一些病症的增殖，血管新生和一些病症转移。与细菌传染，帮助细菌逃避免疫关系很大，并与心血管疾病，老年痴呆等疾病具有密切关系。使用可截留100KD分子量的膜，通过离心截留上清中的外泌体，截留完成后。徐州外泌体提取试剂

使用PBS对膜进行洗脱即得到外泌体浓缩液。开封外泌体提取试剂供应商

作为一种分子通断开关的KRAS发生突变时会处于“开启”状态。在80%～95%的胰腺导管腺病（PDAC）当中，这个基因发生突变，这也是这种一些疾病中较为常见的突变。这些研究人员证实iExosome能够运送特异性地靶向KRAS的siRNA和shRNA分子，并且比他们的合成对应物脂质体（liposome）更加高效。脂质体不具有外泌体表现出的天然复杂性和优势。德州大学MD安德森一些疾病中心一些疾病生物学助理教授ValerieLeBleu博士说，“我们的研究提示着与脂质体相比，外泌体表现出运送siRNA分子和压制侵袭性胰腺瘤生长的优异能力。我们也证实外泌体表面上的CD47存在允许它们躲避来自循环单核细胞的吞噬作用。开封外泌体提取试剂供应商