鼠尾Ⅰ型胶原:选择适当的骨修复材料是治好骨缺损的中心环节。目前,临床上常用的有人工骨移植、自体骨移植和同种异体骨移植。其中,人工骨材料多为磷酸三钙、半水硫酸钙等含有钙和磷的无机矿物材料[1-2],由于不含自体骨组织中的有机大分子Ⅰ型胶原蛋白,其临床疗效远远低于自体骨组织。但是,自体骨移植和同种异体骨移植均来源于人类自身骨组织,数量有限,难...
查看详细 >>无血清细胞冻存:在细胞培养中,细胞冻存是较关键环节之一,尤其在细胞治好、细胞存储中对细胞冻存更有特殊要求,下面就根据降温速度以及冻存液组分对细胞冻存做详细介绍。根据降温速度区分,细胞冻存可以分为程序降温冻存与非程序降温冻存。根据冻存方式不同可以分为慢速冻存(程序降温法)与快速冻存(非程序降温法)。程序降温冻存技术要点是慢冻,标准的冻存程序...
查看详细 >>功能:由于其不同的性质和组成,细胞外基质可以发挥许多功能,例如提供支持、将组织相互隔离以及调节细胞间的通讯。细胞外基质调节细胞的动态行为。此外,它能隔离多种细胞生长因子,并充当它们的局部储存库。生理条件的变化会引发蛋白酶活性,从而导致这类物质在局部释放。这允许快速和局部生长因子介导的细胞功能,而无需从头合成。这种效应已经在一项模型和理论研...
查看详细 >>鼠尾胶原蛋白的提取方法,采用酸法与酶法相结合的工艺,保持恒低温无菌的环境,利用同样浓度的盐溶液进行两次盐析与离心,简化了提纯步骤。所用酸为低浓度酸溶液,并采用柠檬酸替代醋酸进行提纯。从提取原料到样品生成过程中,进行多次真空冷冻干燥,并经进一步处理获得含水率在3%以下的胶原蛋白微粉;较后由灭菌、无菌包装,成品胶原蛋白粉末的纯度在98%以上。...
查看详细 >>外泌体相关miRNA与肺病的诊断:miRNAs是一类含有20~25个核苷酸的非编码小RNA,能够通过下调或压制靶mRNAs来调节转录水平上的基因表达,目前非编码RNA被普遍发现存在于NSCLC患者外泌体中,参与一些病症的形成和演化过程。单个miRNA可能通过压制性复合物与多个mRNA结合,从而阻滞整个生物通路。因此,外泌体的miRNA具有...
查看详细 >>原代细胞与细胞系:原代细胞来源于或是新近死亡的供体,通过机械或酶方法解离获得,其方案根据来源物种(例如人,小鼠)和所涉及的组织类型而变化。通常包含以下步骤:组织切割和切碎,酶解,反复洗涤,研磨和微滤分馏,较后重新悬浮和接种收集的细胞群。对于松散的、被纤维结缔包围的组织,机械均质化可能足以进行解离。如果您的组织来源是外周血,差速离心便可以分...
查看详细 >>原代细胞的获取:1.培养时间无论是酶消化法还是组织块法,取样后培养时间较少需要一周以上的时间,期间可换液或者传代。2.换液时间无论酶消化法还是组织块法,在培养期间需要随时关注细胞的生长状况,需观察其是否贴壁,是否污染,组织块法要观察是否有细胞迁移出来。正常情况下48~72h可换液一次。3.细胞状态判断正常贴壁细胞在培养几天后,会逐渐贴满整...
查看详细 >>转染的注意事项:用于蛋白生产的细胞的转染可以在添加有血清或无血清培养基中进行。但更倾向于使用无血清培养基表达蛋白,因为血清蛋白会干扰下游表达蛋白的纯化。无血清培养基一般针对某一特定细胞类型优化并有几类无血清培养基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培养基低得多)。无蛋白培养基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定...
查看详细 >>细胞转染实验的方法有哪些:1.脂质体法。中性脂质体是利用脂质膜包裹DNA,借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电的阳离子脂质体则不同,DNA并没有预先包埋在脂质体中,而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上,形成DNA-阳离子脂质体复合物,从而吸附到带负电的细胞膜表面,经过内吞被导入细胞。脂质体法始于1987年,此法的出现使得转染效率...
查看详细 >>细胞转染效率低下的几个大坑:1.不注意细节在转染之前更换一次37℃预温的培养基,可提高转染效率。脂质体和DNA/RNA混合物应当一滴一滴地滴下来,从培养皿一边滴到另一边,边滴边轻摇培养皿,以确保均匀分布和避免局部高浓度。这些都是一些细枝末节,但是,如果不注意的话,也会造成转染效率低下。2.细胞状态不好细胞状态不好,会导致转染效率低下。一般...
查看详细 >>细胞转染常用步骤:1.转染试剂的准备①将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。②震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2.选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA,震荡后在加入合适体积的转染试剂...
查看详细 >>细胞转染那些事儿:1.选择传代次数较低并处于对数生长期的细胞进行转染。对大多数细胞而言,均需要在转染当天或前现在铺板,第二天上午进行转染,48h后收集细胞进行功能检测。对于原代细胞,可用促有丝分裂刺激物进行细胞活化。2.对于贴壁细胞,一般要求在转染前一日,用胰酶处理为单细胞悬液,重新接种于培养皿或瓶,较好在转染前4小时换一次新鲜培养液。3...
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