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免疫荧光实验的注意事项:为了保证荧光染色的正确性,初次试验时需设置下述对照,以排除某些非特异性荧光染色的干扰。①标本自发荧光对照:标本加1-2滴0.01mol/L,pH7.4的PBS。②特异性对照(抑制试验):标本加未标记的特异性抗体,再加荧光标记的特异性抗体。③阳性对照:已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体。如果标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光,阳性对照和待检标本呈强荧光,则为特异性阳性染色。一般标本在高压汞灯下照射超过3min,就有荧光减弱现象,经荧光染色的标本较好在当天观察,随着时间的延长,荧光强度会逐渐下降。免疫荧光技术可以通过荧光显微镜观察样品中的荧光信号,从而确定目标分子的存在和位置。p65免疫抗体

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免疫荧光实验的注意事项:对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从10min到数小时,一般30min已足够。染色温度多采用室温(25℃左右),高于37℃可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2℃的低温,延长染色时间。低温染色过夜较37℃30min效果好的多。C-FOS免疫检测免疫荧光技术是将抗体与荧光素等示踪物质结合,通过抗原抗体反应进行定位。

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zo-1的免疫荧光,步骤如下:1.细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。2.用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟。3.4%的甲醛室温固定20-30分钟。4.1×PBS洗3次,每次10分钟。5.0.2%TritonX-100透化2-5分钟。6.1×PBS洗3次,每次10分钟。7.5%BSA室温封闭30分钟。8.加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜。9.1×PBS洗3次,每次10分钟。10.加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光。11.1×PBS洗3次,每次10分钟。12.95%甘油封片。注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释。

细胞的固定及免疫荧光:吸去一抗,使用PBS浸洗 3 次,每次 5 min。向孔内滴加足够量适宜浓度的二抗,37℃,室温避光孵育1小时。注意二抗带有荧光素标记,因此操作过程尽量在暗处进行。吸去二抗,使用PBS浸洗 3 次,每次 5 min。向玻片上滴加DAPI,或者Hoechst复染细胞核,一般为蓝色荧光;避光孵育5-10min。使用PBS轻洗细胞3 次,每次 5 min,洗去多余的DAPI。取爬片时由于爬片与培养皿底结合较紧,张力较大,可将注射器针头针尖向背面做个小钩,这样将爬片轻轻勾起,用小镊子取出即可。用吸水纸吸干爬片上的液体,用含抗荧光淬灭剂的封片液封片,注意将爬片反过来贴于多聚赖氨酸载玻片上,然后在荧光显微镜下观察并采集图像,注意选择抗体对应的激发光源。免疫荧光技术可以用于研究动物模型和药物筛选。

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细胞免疫荧光实验注意事项:1、建议细胞直接种孔板,采用倒置荧光显微镜拍照,这样可以避免然后挑片时造成划片或细胞片破损以及然后封片可能造成滑片等结果;2、若实验室只有正置荧光显微镜,则需要将细胞植于细胞爬片。建议直接购买处理过的细胞爬片;若只有普通细胞爬片,可以先将爬片于浓酸(浓酸腐蚀性强,注意操作)或 75% 乙醇浸泡过夜,若用酸浸泡过夜,第二天先用自来水小心冲洗掉爬片残留的酸液,若用 75% 乙醇浸泡,则不需要此步骤。然后,用洗洁精搓洗爬片,然后用去离子水清洗爬片。置于烘箱 80 ℃ 烘干,再将爬片置于超净台造紫外消毒后备用。免疫荧光技术可以用于研究细胞内蛋白质的亚细胞定位。p65免疫抗体

免疫荧光是一种常用的生物学实验技术,用于检测和定位特定抗原或抗体。p65免疫抗体

细胞免疫荧光实验常见问题:1、信号弱或者无信号:细胞或组织样本保存时间过长;2)抗体浓度不合适,参照抗体说明书的稀释浓度,再根据样本表达量进行摸索;3)一抗孵育时间不合适,建议 4 ℃ 过夜孵育。2、高背景:封闭不充分;抗体浓度过高;抗体孵育时间过长或温度过高;清洗不充分;样本变干,染色过程确保样品始终浸没于液体环境中.3、非特异性染色较多:固定液残留,这里需要缩短固定时间并且在封闭液中加甘氨酸,并且抗原修复也可以帮助解决非特异性染色;二抗残留,二抗需要用带有吐温 20 的 PBS 溶解,只要荧光显微镜的强度还可以增大,那么就可以增加吐温洗脱掉非特异性染色。p65免疫抗体

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