常用动物实验选择1.名称：KM小鼠主要用途：广泛应用于药理学、毒理学等领域研究以及药品、生物制品的生产与检定。简介：1926年美国Rockfeller研究所从瑞士引入白化小鼠培育成Swiss小鼠。1944年3月17日由汤飞凡教授从印度Hoffkine研究所引进Swiss小鼠，饲养在昆明国家防疫处。由于该小鼠起初引入地是昆明，故称之为昆明小鼠。解放后国家防疫处迁回北京天坛，更名为卫生部生物制品研究所。1950年小鼠随之引到北京天坛（检定所现址），当时保种9对。1953年10月移至北京东郊，1954年扩种，相继引到其他单位，现已遍布全国各地。特点：远交系小鼠，经50多年的选育，现在KM小鼠zl自发率极低。不同地饲养的昆明小鼠封闭群的生长发育与繁殖性能存在一定差异。但其共同特点是抗病力和适应力很强，繁殖率和成活率高。它在我国生物医学动物实验中约为小鼠总用量的70%。严格的质量控制体系保障常州卡文斯实验鼠的健康状态。SPF大小鼠繁殖育种
品系名称:SHRRat***大鼠品系对照:WKY品系类别:近交系品系毛色:白化产品状态:***品系描述:来源:1961年左右，日本京都大学(KyotoUniversity)医学院Okamoto(Koz00kamoto)实验室在Wistar大鼠中将具有自发性***(尾静脉压即收缩压150~175mmHg)的雄性Wistar大鼠(7周龄)与血压稍高于平均水平的(收缩压140~150mmHg)雌性Wistar大鼠交配，从所得的F1***始进行近交筛选。在近交筛选过程中观察到，随着代数增加，自发性***发生率逐渐增大而发生的时间(年龄)越来越早，严重***(高于200mmHg)的大鼠发生率也越来越高。**终形成了所有雄性和雌性自发***发生率100%的近交系SHR,应用领域:遗传性***模型、***药物研究、多动症(ADHD)模型。db/db小鼠技术指导卡文斯实验鼠在行为学实验中表现稳定，数据可靠。
由于与人类基因有99%的相似性，小鼠可以被用于衰老、免疫、血液疾病、神经系统、感官疾病以及代谢性疾病的研究。也许你会觉得这些很抽象很难以理解，那么就让我借助“小鼠模型”来解释一下。什么是小鼠模型？与人类和其他哺乳动物一样，小鼠也会患有免疫、内分泌、神经、心血管、骨骼和其他复杂生理系统方面的疾病，例如病情ai变性症状、血压高出正常、糖尿病、骨质疏松症和青光眼等。于是科研工作者就试图通过遗传技术对小鼠进行基因编辑，从而建立起患有“单一”疾病的小鼠以帮助人类进行疾病研究。这些患有“单一”疾病的小鼠，就是小鼠模型。目前可用的小鼠模型不仅限于病情ai变性症状方面，糖尿病、肥胖、失明、亨廷顿氏病（舞蹈症）和焦虑症方面都建立了相应的小鼠模型。现如今，美国的杰克逊实验室（JacksonLaboratory）已经向全世界分发了2700种实验鼠，而这些实验鼠所首的疾病模型，正在帮助全世界的科学家进一步研究那些与人类息息相关的疾病。
设施环境不达标会给小鼠带来的影响有哪些？小鼠本身特性性情温顺，容易捕捉，胆小怕惊，不主动咬人。但性成熟的非同窝雄性易相互打斗并咬伤背部、尾部、生殖器等。但是1、若温度过高（超过30℃）会造成♂：睾丸萎缩或形成精子的能力下降；♀：性周期紊乱，泌乳能力下降或拒乳。日温差不能过大（≤3℃），因为对于裸鼠，不能有效的保持体温。2、湿度过大，会造成微生物易于繁殖，饲料、垫料易霉变，动物易患呼吸系统疾病；小仔发育不良，哺乳雌鼠吃仔。3、噪声超标可引起动物紧张、流产、产仔率下降和吃仔等现象。常州卡文斯提供基因编辑实验鼠定制服务，助力前沿生物医学研究。
腹腔注射腹腔注射虽然简单，也有翻车的危险。一针下去，扎到内脏，呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下：抓鼠后选择低尾高位的位置；选择下腹部腹中线进针；小于60度进针有落空感；回抽未见血后推针，旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药，利用腹腔膜及大小网膜血管丰富，吸收面积大等特点，使药物快速入血。注意事项：1、腹腔注射只宜用等渗药液（如5％葡萄糖液、0.9％生理盐水）适当配无刺激性的药物（如肌苷、维生素B1、维生素C），而且注射量不宜太大，注射药液温度应与体温相近。2、注射时，小鼠头部要呈低位，使内脏向胸部侧偏移，针头不宜过长，以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫，切勿为避免刺伤身体部位，针头刚插入皮肤就向上挑起，此时针头极有可能还没刺破腹腔壁，只是将液体注射在腹部皮下。常州卡文斯实验鼠品系涵盖C57BL/6、BALB/c等常用科研品种。实验小鼠焦虑症
长期睡眠剥夺的实验小鼠，其记忆力测试成绩较正常睡眠组明显降低。SPF大小鼠繁殖育种
大鼠的抓取固定大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指，抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口，敏捷地从后，一把抓住。若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒即可）。注意事项：为了减少或避免大鼠在实验中发生的应激反应，以减少对实验者的攻击损伤，这里介绍几种抓取大鼠的技巧改进：（1）在抓取前可用一条清洁的毛巾蒙住大鼠全身，大鼠处于黑暗状态下神经会有所放松，看不到实验者的动作也会降低对实验者的攻击机会；（2）一般抓取大鼠都会抓住尾巴，但是有时大鼠尾巴不在身后而在其面前，这时实验者可能在抓取鼠尾的时候被大鼠攻击。这种情况一般可以轻推其腰臀部，使之变换姿势，待鼠尾调整到身后再进行抓取；（3）由于大鼠尾部被抓起时，会应激性地排便、排尿，所以比较好在粗糙表面上垫上报纸等，做好防范措施，减轻工作量。SPF大小鼠繁殖育种
