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免疫组化基本参数
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免疫组化企业商机

免疫组化的抗原修复

很多抗原的可视性可以通过抗原修复来提高,抗原修复可以打破福尔马林固定时形成的蛋白质交联,从而使被掩藏的抗原显现出来。抗原修复技术包括不同时间长度的加热或者利用蛋白酶来做酶消化,例如蛋白酶K,胰蛋白酶或胃蛋白酶。加热的方法通常会用到微波炉,高压锅,蒸箱或水浴。将样品在接近100°C高温加热20分钟后再冷却同等的时间。**常用的抗原修复液有a)柠檬酸盐缓冲剂,pH6.0,b)Tris-EDTA,pH9.0和c)EDTA,pH8.0.如需要可用柠檬酸盐缓冲剂做抗原修复:柠檬酸盐缓冲剂配方:10mM柠檬酸钠,0.05%Tween-20,pH6.0或10mM柠檬酸,0.05%Tween-20,pH6.0将含有柠檬酸钠或柠檬酸盐缓冲剂的染色盘放到蒸箱或者水浴中,预热到95-100°C。将切片浸没于染色盘中。盖子虚掩,孵育20-40分钟(研究者需自己决定比较好的孵育时间)。关掉蒸箱或水浴,将染色盘置于室温下,让切片冷却20分钟。在TBS-Tween-20中漂洗切片2次,每次2分钟。开始封闭步骤。 免疫组化protocol,详情请看英瀚斯生物官网。四川靠谱免疫组化怎么选择

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免疫组化染色呈阴性结果的原因有哪些?

1、抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误。不是抗体浓度越高就越易出现阳性结果,抗原抗体反应有前带和后带效应,必须摸索比较好浓度。

2、抗原修复不全,对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位,以利于与抗体结合;建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验,这是比较好的时间和次数。若不行,还可高压修复。

3、组织切片本身这种抗原含量低。

4、血清封闭时间过长。

5、DAB孵育时间过短。

6、细胞通透不全,抗体未能充分进入胞内参与反应。

7、开始做免疫组化,建议一定要首先做个阳性对照片,排除抗体等问题。 四川切片免疫组化注意事项英瀚斯生物为您详解免疫组化实验指南!

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免疫组化技术有哪些应用?

定位和定性是免疫组化比较大的优势。相比于其他蛋白检测方法,免疫组化具有定位较直接准确、定性灵敏度高,是定位检测分析优先方法,尤其对于有些因子的转位研究十分有用。免疫组织化学的临床应用主要包括以下几方面:恶性**的诊断与鉴别定性;确定转移性恶性**的原发部位;对某类**进行进一步的病理分型;软组织**诊断;为临床提供治疗方案的选择;近年来,随着免疫组织化学技术的发展和各种特异性抗体的出现,使许多疑难**得到了明确诊断。免疫组化在**诊断和鉴别诊断中的实用价值受到了普遍的认可,其在低分化或未分化**的鉴别诊断时,准确率可达50%-75%。


免疫组化的结果分析:

免疫组化实验通常需要设置阳性对照、阴性对照(或替代对照)(阳性对照是排除方法和实验系统有无问题;阴性对照与替代对照是排除有无非特异性染色)。一般情况下,阳性对照颜色的特点为:Ag定位,包浆、胞核、胞膜、间质具有结构性。且染色的强度不同(颜色深浅不一);阴性对照的特点为:染色细胞与组织无区别,颜色具有弥散性,分布均匀。

英瀚斯生物可承接各类病理染色,包括免疫组化。

说明:免疫组化实验可以对结果进行定量分析,但要实验得到的必须是高质量的染色切片,要求背景染色浅且特异性染色较深,这样分析的结果才会比较准确。 大鼠、小鼠组织免疫组化,找英瀚斯生物。

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免疫组化结果要如何分析?

 (1)阳性着色细胞计数法。在40*光镜下,随机选择不重叠的10个视野,机器或人工计数阳性着色细胞,每组3~6张不同动物组织切片,然后进行组间比较即可。

(2)灰密度分析法。可以通过在不同组别和不同动物组织切片上选择相同区域、相同条件下用image j进行灰密度分析,然后进行统计分析即可。

(3)评分法。用光学显微镜下对组织切片分别按染色程度(0~3分为阴性着色、淡黄色、浅褐色、深褐色)、阳性范围进行评分(1~4分为0~25%、26~50%、51~75%、76~100%),**终可以分数相加,再进行比较。对于以上这几种方法,各有利弊,请细心选择。要想得到正确结果的前提是你要做出着色均匀、背景很浅的高质量切片。


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实验失败常见问题分析有哪些:

为什么在显微镜下观察发现所有的切片都成阴性?

答:这种现象主要是由操作不当导致,可能的原因有:1.染色操作不当,致使染色失败;2.漏加一种抗体或者制备出的抗体没有活性;3.缓冲液中有叠氮化钠,抑制了酶的活性;4.复染或脱水剂使用不当等。建议逐一排查,找到原因后重新进行实验。

在显微镜下观察发现所有的切片都成阳性,这是为什么?答:与上一个问题类似,出现的原因也是试验操作存在问题,可能的原因有:1.切片在染色过程中抗体过浓,或者干片了;使用的呈色底物溶液已变色或呈色反应时间过长;3.抗体温育的时间过长等。

在显微镜下观察发现切片的背景很深,这是为什么?答:以下几方面会导致切片的背景过深:1.蛋白质封闭不够或所用血清溶血,造成抗体的非特异性反应;2.内源性过氧化酶没有完全阻断,显色过程中过氧化酶与酶底物反应,造成背景;3.底物呈色反应时间过长或呈色反应后漂洗不彻底。 四川靠谱免疫组化怎么选择

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