缓冲溶液的配制和应用：为了配制一定pH的缓冲溶液，首先选定一个弱酸，它的pKaφ尽可能接近所需配制的缓冲溶液的pH值，然后计算酸与碱的浓度比，根据此浓度比便可配制所需缓冲溶液。以上主要以弱酸及其盐组成的缓冲溶液为例说明它的作用原理、pH计算和配制方法。对于弱碱及其盐组成的缓冲溶液可采用相同的方法。缓冲溶液在物质分离和成分分析等方面应用普遍，如鉴定Mg2 离子时，可用下面的反应：白色磷酸铵镁沉淀溶于酸，故反应需在碱性溶液中进行，但碱性太强，可能生成白色Mg（OH）2沉淀，所以反应的pH值需控制在一定范围内，因此利用NH3·H2O和NH4Cl组成的缓冲溶液，保持溶液的pH值条件下，进行上述反应。利福平溶液怎么配制：加入40ml甲醇，振荡充分混合溶解之后定容50ml，可以涡旋。二苯胺试剂(1%)
食品检测检测试剂盒样品收集、处理及保存方法：血清-----操作过程中避免任何细胞刺激。使用不含热原和内毒液的试管。收集血液后，1000×g离心10分钟将血清和红细胞迅速小心地分离。血浆-----EDTA、柠檬酸盐、肝素血浆可用于检测。1000×g离心30分钟去除颗粒。细胞上清液---1000×g离心10分钟去除颗粒和聚合物。保存------如果样品不立即使用，应将其分成小部分-70 ℃保存，避免反复冷冻。尽可能的不要使用溶血或血脂高血。如果血清中大量颗粒，检测前先离心或过滤。不要在37℃或更高的温度加热解冻。应在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。Tris-EDTA缓冲液(0.1mM EDTA,pH8.0)试剂成份、纯度、用量及稳定性，才是保证试剂质量的关键所在。
用pH计测定配制好的盐溶液的pH值，使其在6.4~7.0之间。一般盐雾标准中要求试验过程中的盐雾收集液pH值在6.5~7.2之间。当pH值不在上述范围时，应用氢氧化钠（NaOH）或者冰乙酸（CH3COOH）进行调节。氢氧化钠可以使pH值升高，冰乙酸使pH值降低。通常只需要加入少量的即可调节pH值。在氯化钠溶液中加入少量冰乙酸，搅拌均匀，并用pH计测量溶液的pH值，直至其为3.0-3.1之间，试验过程中收集液的PH值应在3.1-3.3之间。配制好乙酸盐雾溶液后，加入氯化铜，其浓度为0.26g/L±0.02g/L（即0.205g/L±0.015g/L无水氯化铜）。调节溶液的pH值，直至其为3.0-3.1之间，试验过程中收集液的PH值应在3.0-3.1之间。
试剂盒的原理：根底是抗原或抗体的固相化及抗原或抗体的酶符号。结合在固相载体外表的抗原或抗体仍保持其免疫学活性，酶符号的抗原或抗体既保留其免疫学活性，又保留酶的活性。在测定时，受检标本（测定其中的抗体或抗原）与固相载体外表的抗原或抗体起反响。用洗刷的办法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与液体中的其他物质分隔。再参加酶符号的抗原或抗体，也通过反响而结合在固相载体上。此刻固相上的酶量与标本中受检物质的量呈必定的份额。参加酶反响的底物后，底物被酶催化成为有色产品，产品的量与标本中受检物质的量直接相关，故可根据呈色的深浅进行定性或定量分析。杀灭曲线的建立：按照每2天进行活细胞计数，来确定杀灭未转染细胞的恰当浓度。
检测试剂盒实验加样要求：有此测定（如间接法检测试剂盒）需用稀释的血清，可在试管中按规则的稀释度稀释后再加样。也可在板孔中参加稀释液，再在其中参加血清标本，然后在微型震荡器上震荡1分钟以确保混和。加酶结合物使用液和底物使用液时可用定量多道加液器，在检测试剂盒中一般有两次抗原抗体反响，即加标本和加酶结合物后。抗原抗体反响的完结需求有必定的温度和时刻，这一保温进程称为温育(incubation)，有人称之为孵育，在检测试剂盒中似不恰当。按检测试剂盒说明书的要求预备实验中需用的试剂。检测试剂盒顶用的蒸馏水或去离子水，包括用于洗刷的，应为新鲜的和高质量的。自配的缓冲液使用pH计测量较正。从冰箱中取出的实验用试剂应待温度与室温平衡后使用。试剂盒中本次实验不需用的部分应及时放回冰箱保存。见光易分解的试剂（如硝酸银）应装在棕色瓶中。Tris缓冲盐粉剂(1×TBS)
磷酸缓冲盐溶液可以破坏生物蛋白的结构及生物特性。二苯胺试剂(1%)
怎样减少检测试剂盒误差？检验技师应具备从事实验室操作的基本素质和实践经验。能熟练操作实验仪器、器械，具有一定总结和分析问题的能力，对实验中出现的意外情况能及时妥善解决。使用校对过的微量移液器，排除自然误差。移液器准确与否对定量检测尤为重要。仔细阅读说明书，严格按照说明书要求进行规范化操作。不同批号的试剂不可混用。值得改进的地方，反复试验确定成立后才能改进。洗涤彻底，如若洗板不彻底，酶结合物本底显色会呈现假阳性。洗涤液要新鲜，现用现配，陈旧的洗涤液会出现本底增高现象，也可能出现假阳性。二苯胺试剂(1%)
