为了避免溶液洒出，同时不要让溶液在刻度线上面沿瓶壁流下，用玻璃棒引流。为保证溶质尽可能全部转移到容量瓶中，应该用蒸馏水洗涤烧杯和玻璃棒二、三次，并将每次洗涤后的溶液都注入到容量瓶中。轻轻振荡容量瓶，使溶液充分混合。(用玻璃棒引流)定容：加水到接近刻度2-3厘米时，改用胶头滴管加蒸馏水到刻度。定容时要注意溶液凹液面的低处和刻度线相切，眼睛视线与刻度线呈水平，不能俯视或仰视，否则都会造成误差。 摇匀：定容后的溶液浓度不均匀，要把容量瓶瓶塞塞紧，用食指顶住瓶塞，用另一只手的手指托住瓶底，把容量瓶倒转和摇动多次，使溶液混合均匀。检测试剂盒稀释时可在水浴中加温助溶。血小板稀释液(计数液)
食品检测检测试剂盒注意事项:检测试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未用完，板条应装入密封袋中保存。浓洗涤液可能会有结晶析出，稀释时可在水浴中加温助溶，洗涤时不影响结果。各步加样均应使用加样器，并经常校对其准确性，以避免试验误差。一次加样时间好控制在5分钟内，如标本数量多，推荐使用排加样。如标本中待测物质含量过高（样本OD值大于标准品孔*孔的OD值），请先将样本稀释一定倍数（n倍）后再测定，计算时请后乘以稀释倍数（×5×n）。淀粉样物质染色液(改良Stores刚果红法)科研实验中试剂取用应注意事项：读数时量筒必须放平稳。
pH缓冲溶液的效能指标：pH缓冲溶液抵抗外加强酸、强碱的能力可以用缓冲容量β来表示，缓冲容量的意义是，使1L缓冲溶液的pH增大1个单位时需加入的强碱（NaOH）的物质的量（mol），或减小1个pH单位时时需加入的强酸（HCl）的物质的量，显然β越大，缓冲外加强酸强碱的能力就越大。β与pH、总浓度C及共轭弱酸碱的浓度比有关。式中的C为弱酸+弱酸盐（或弱碱+弱碱盐）的总浓度，显然，总浓度越大，缓冲能力就越大。式中的两个δ分别为弱酸HA、弱酸根A-（又称共轭碱）的分布分数值，δ定义为其平衡浓度与总浓度之比（我以前在论坛中曾作过介绍），它们也是pH值的函数。数据学上可以证明：恒定C时，当两个分布分数值均等于0.5时，缓冲容量较大，其实用意义是：选择缓冲溶液体系时，应该选弱酸与弱酸盐的浓度比接近1，而pH值仍能满足配制要求的体系，对于弱碱及弱碱盐溶液，也有同样的要求。
酶的校正：要满足在同一方法学、同一测定条件、与理论计算的FACTOR值差异不大，没有发现有明显影响因素，方可 进行校正。检验结果溯源性，得建立一个可靠的参考系统作为准确性基础，然后将准确性转移到常规方法测定中去，使常规方法测定结果可溯源到参考系统所提供的准确性基础上来。在实现溯源性目标过程中，永远以患者新鲜标本为实验对象，以方法学对比试验方法为验证手段。方法学对比试验常采用回归方程进行统计分析，假如斜率接近1，截距较小，这意味着实验室常规方法对标本测定结果和溯源目标参考系统对标本检测结果非常接近。PBS是磷酸缓冲盐溶液(phosphate buffer saline)一般作为溶剂。
培养方法：1.体外分离获得瘤浸润淋巴细胞（tumor infiltrating lymphocytes, TIL）。2.活化阶段：用培养液调节成1*106/ml接种于孔板中，加入IL-2（1000U/ml），在37℃，5%CO2条件下培养。注：一般培养的初期（7天左右）细胞无明显生长，为生长克制期。由于瘤本身固有的生物学特性、瘤抗原性及淋巴细胞浸润程度等，体外增殖前期会受到不同程度的克制；前期需尽快去除瘤细胞，如重量沉降法及贴壁去除法等，需具体情况具体分析。（前期处理有学者采用PHA、胰岛素、胰素等不同方法刺激）3.增殖阶段：细胞增殖到107后，用CD3单抗（30ng/mL）、CD28（30ng/mL），加入经180Gy辐射的健康供者PBMC（1*108）的培养瓶中，刺激第二天，加入IL-（4000U/ml）快速扩增。浓洗涤液可能会有结晶析出，稀释时可在水浴中加温助溶，洗涤时不影响结果。弱磷酸盐缓冲液(LoPBS,pH7.0)
检测试剂盒变质的原因：样本因素。血小板稀释液(计数液)
PH缓冲液：正常人血浆的pH值为7.35～7.45。血浆PH值的相对恒定性有赖于血液内的缓冲物质以及正常的肺、肾功能。血浆的缓冲物质包括NaHCO3/H2CO3、蛋白质钠盐/蛋白质和Na2HPO4/NaH2PO4三个主要的缓冲对，其中以NaHCO3/H2CO3较为重要。红细胞内还有血红蛋白钾盐/血红蛋白、氧合血红蛋白钾盐/氧合血红蛋白、K2HPO4/KH2PO4、KHCO3/H2CO3等缓冲对参与维持血浆PH值的恒定。当酸性或碱性物质进入血液时，血浆中的缓冲物质可有效的减轻酸或碱性物质对血浆PH值的影响，特别是肺和肾保持正常的排出体内过多的酸或碱的功能的情况下，血浆PH值的波动范围极小。血小板稀释液(计数液)
