检测试剂盒实验注意事项:检测试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未用完，板条应装入密封袋中保存。浓洗涤液可能会有结晶析出，稀释时可在水浴中加温助溶，洗涤时不影响结果。各步加样均应使用加样器，并经常校对其准确性，以避免试验误差。一次加样时间建议控制在5分钟内，如标本数量多，推荐使用排加样。请每次测定的同时做标准曲线，建议做复孔。如标本中待测物质含量过高（样本OD值大于标准品孔第yi孔的OD值），请先用样品稀释液稀释一定倍数（n倍）后再测定，计算时请乘以总稀释倍数（×n×5）。用无菌吸管吸掉上层血浆和血小板，不要碰到单个核细胞层。氯化钠溶液(1mol/L)
杀灭曲线的建立：通过建立杀灭曲线（剂量反应曲线），确定能够杀死未转染宿主细胞的较低浓度，从而筛选得到稳定表达目的蛋白的细胞株。建立杀灭曲线至少选择5个浓度。1、按照20-25%的细胞密度将未转化的细胞铺在合适的培养板上，37℃，CO2过夜培养（需要更高密度，可增加接种量）。2、根据细胞类型，设定合适的浓度梯度。以哺乳动物细胞为例，可设定50，100，250，500，750，1000μg/mL。3、第2天换用新鲜配制的含有相应浓度药物的培养基，每个浓度做三个平行孔。4、接下来每3-4天更换新的含药物培养基。5、按照每2天进行活细胞计数，来确定杀灭未转染细胞的恰当浓度。通常7-10天内能够杀死绝大多数细胞的较低浓度为筛选用的工作浓度。细胞色素氧化酶染色液(联苯胺法)PH电极的保护液，即 3mol/L的KCL溶液。
丁胺卡那霉素给药说明：（1）应监测血药浓度，尤其新生儿、老年和肾功能减退的患者，本品的有效治好浓度范围为15—25μg/ml，应避免高峰血药浓度持续在35μg/ml以上和谷浓度超过5μg/ml。（2）不能测定血药浓度时，应根据测得的肌酐除去率调整剂量。（3）给予开始饱和量（7.5mg/kg）后，有肾功能不全、前庭功能或听力减退的患者所用维持量酌减，即剂量不变，延长给药间期；或给药间期不变，每次剂量减少或停用本品。其维持量可按下式计算。①延长给药间期（小时）,每次用量不变（7.5mg/kg），给药间期=患者血肌酐（mg/100ml）×9或②减少每次给药量，每12小时用药一次：每次剂量=患者肌酐除去率（ml/min）×7.5（mg/kg）/正常人肌酐除去率（ml/min）。由于阿米卡星在体内不代谢，主要经尿排出，因此肾功能减退的患者可能引起药物积聚达中毒浓度。
淋巴细胞亚群及其功能：T淋巴细胞及其分类主要应用抗T细胞表面抗原McAb.根据T淋巴细胞表面分化抗原将成熟T细胞分为CD4+、CD8-和CD4-、CD8+两大亚群，T淋巴细胞的功能与表现型之间的对应关系是相对的，其免疫活性可能受“微环境”的影响，并受MHC抗原的制约，许多研究证明，CD4+T细胞具有杀伤活性，介导Ι类抗原不相容时的靶细胞溶解。TU等研究表明，CD4+的细胞毒活性存在两种完全不同的机理，并证明TH1和TH2的细胞毒活性不同。前者强，后者弱或无活性。Dennert等发现，克隆化的T淋巴细胞具有辅助，细胞毒活性和迟发型超敏反应作用，这种功能的多样性有赖于所采用的分析方法。CD4+细胞识别Ι类MHC抗原，其效应的发挥也受Ι类抗原的制约；CD3+细胞识别Ι类MHC抗原，发挥免疫效应也受其控制。检测试剂盒保存在2-8℃，使用前室温平衡20分钟。
丁胺卡那霉素给药说明：1.患者应给予足够的水分，以减少肾小管损害。2.烧伤患者中本品的半衰期较短（1—1.5小时），因此可能需用5—75mg/kg，每6小时一次。3.长期用药可能导致耐药菌过度生长。4.配制静脉用药时，每500mg加入氯化钠注射液，5%葡萄糖注射液或其他灭菌稀释液100—200ml，上述溶液用于成人病例应在30一60分钟内，婴儿患者于1一2小时内缓慢输入，并相应减少稀释液量。本品不可直接静脉推注，以免产生神经肌肉阻滞和呼吸克制作用。检测试剂盒有稳定的重复性和可靠性。LB Lennox培养基粉剂
从滴瓶中取用液体试剂时，要用滴瓶中的滴管，滴管决不能伸入所用的容器中。氯化钠溶液(1mol/L)
如何判断是否是基质效应呢？第一种方法是采用线性稀释，一般来讲，抗原和捕获抗体、检测抗体之间的结合作用很强，样品浓度被稀释并不影响它们的结合，而造成基质效应的非特异结合的力要弱很多，如果不断稀释样品，非特异结合造成的干扰会逐步减少，测量值也更接近真实值。没有基质效应时，无论如何稀释，测量值都和真实值吻合。而有基质效应时，稀释会造成非特异性结合比例的减少，测量值也相应地产生很大改变。第二种方法是掺入回收率实验，将低、中和高浓度的分析物掺入到已测定过浓度的样本中，掺入前后实测到的浓度增加部分与掺入浓度之比就是回收率，回收率以百分比的形式呈现。回收率介于80-120%，才符合标准。氯化钠溶液(1mol/L)
