外泌体载药系统一直是众多研究者关注的焦点。SUN等人在早期的动物实验中对脂多糖（LPS）诱导的脓毒性休克小鼠模型进行腹腔注射含姜黄素的外泌体。结果表明，外泌体可用作kang炎药物的体内载体。自此，揭开了外泌体介导药物传递系统研究的新篇章。他们改用鼻腔内注射，结果发现，载有姜黄素或信号传导与转录激huo因子3抑制剂的外泌体可用于zhiliaoLPS诱导的脑炎症、实验性自身免疫性脑炎和GL26脑中流模型。随后又有研究者发现，向野生型小鼠静脉注射携带小干扰核糖核酸序列的外泌体，能明显抑制阿尔茨海默病zhiliao靶点β-淀粉样前体蛋白裂解酶1的表达。装载了连翘酯苷A(FTA)的A549来源的外泌体无论是4℃还是37℃在1周内可以稳定存在。广东样本外泌体载药
外泌体作为纳米级内源性载体囊泡，具有低免疫原性，可以利用天然独特的来源透过细胞屏障；为球形空心结构，不需要设计结构而装载药物；为细胞间通信介质而用于递送药物；对外泌体修饰可获得靶向性，提高药物递送的效率。但外泌体产量一直比较低，已有研究基于Fe2O3与聚乳酸⁃乙醇酸共聚物的生物可降解纳米颗粒（NPs）提高外泌体产量，用LPS刺激THP-1巨噬细胞也会增加外泌体产量。由于外泌体的得率较低，载药时应考虑药物性质选择合适的载yao方法，以达到外泌体的合理运用。北京动物细胞样本外泌体载药实验咨询问价装载了连翘酯苷A(FTA)的A549来源的外泌体可以被A549细胞摄取。
细胞外囊泡（EVs）因其生物相容性、大小适宜、体循环中保存时间长和低免疫原性等优势，在生物医学应用中得到了普遍的应用。研究发现EV比普通的细胞膜囊泡更有优势。EV的优势在于，由于其表面的跨膜蛋白（如MHC复合物）数量减少，它们的免疫原性低于其宿主细胞膜，具体的多少取决于它们的细胞来源。凋亡小体、微泡和外泌体是根据EV的生物成因进行分类的。当胞内体的膜向内萌发形成外泌体时，就产生多泡体（MVB）。当MVBs与质膜融合时，外泌体被释放到细胞外空间。一旦从细胞表面释放出来，外泌体能够与细胞外基质相互作用，或在微环境内外引发反应。将RNA和蛋白质引入外泌体，并将其定向到身体特定区域的方法仍在开发中。外泌体被认为是一种合适的药物传递系统，因为蛋白质和遗传物质都可以装载到其中。
Xin等人研究了装载miＲ-17-92团簇的间充质干细胞外泌体（MSC-Exo）对中风大鼠神经学功能的恢复作用。与脂质体处理组相比，MSC-Exo处理组的神经功能得到明显改善;与MSC-Exo对照组相比，富含miＲ-17-92团簇的MSC-Exo处理对缺血边界区中神经功能的改善和少突胶质细胞的发生，神经元树突可塑性的增强具有更优的作用。研究表明，MSC-Exo本身具有改善中风大鼠神经损伤的作用，而包载miＲ-17-92团簇之后该功能得到增强。另有研究发现，在中风大鼠模型中，载有丰富miＲ-133b的MSC-Exo除具有上述作用外，还能促进星形胶质细胞释放外泌体。在氧和葡萄糖剥夺条件下，富含miＲ-133b的MSC-Exo预处理星形胶质细胞能够产生外泌体，并且该外泌体有助于脑中风的神经修复。外泌体具有对自身中流的靶向能力，作为载体传递药物可以增加中流部位的药物浓度。
外泌体载带蛋白质药物的方法包括直接和间接两种载yao方式。间接载yao方式是目前实现外泌体载带目标蛋白质的主要方法，通过基因工程使目标蛋白质核酸转染供体细胞，待供体细胞表达目标蛋白质后，分离纯化其培养基，得到载带有目标蛋白质的外泌体递送系统。主要缺点是载药周期长、载药量和载药过程不可控，在一定程度上限制该方法在构建外泌体递送系统上的应用；直接载yao方式是指不涉及外泌体供体细胞，直接通过某种化学或物理作用将外源性蛋白质载入外泌体中的方法。因周期短、操作简单、过程可控等优点，成为一种极句前景的研究方法。ai细胞的外泌体优先与其亲本ai细胞融合，具有靶向母体ai症的特点，可作为有效的载体包载药物。北京动物细胞样本外泌体载药实验咨询问价
在小鼠模型中利用外泌体装载姜黄素和过氧化氢酶可证明其在神经保护方面的作用。广东样本外泌体载药
外泌体载药系统一直是众多研究者关注的焦点。外泌体作为细胞-细胞间交流的“运载工句”，外泌体在正常及疾病下都发挥着不可忽视的功能。利用抗ai症药物进行中流zhiliao是抑制中流的一个重要方法，目前抗ai症药物的运载存在着种种挑战，主要体现在:(1)抗ai症药物的疏水性;(2)抗ai症药物的毒性以及非靶向性;(3)易被人体qing除，体内循环的半衰期很短等。采用外泌体运输抗ai症药物，可以提高药物体系的水溶性，降低药物对人体的毒性以及避免被网状内皮系统捕捉从而延长其循环时间。广东样本外泌体载药
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