外泌体的提取主要包括以下几种方式:一是色谱法,这种方法分离到的外泌体在电镜下大小均一,但是需要特殊的设备,应用不普遍。二是微流控分离法,该方法通过负压及震荡等机械原理分离外泌体,产量纯度均具有较大幅度提高,但需要特定设备配合。外泌体分离方法之纳米粒径分析法:确定性横向位移依赖于颗粒流动路径的变化,而颗粒流动路径取决于颗粒尺寸。这种方法虽然比较简单,但是需要使用扫描电镜技术、动态光散射技术、纳米粒子跟踪分析技术、单粒子干涉反射成像传感器(SP-IRIS)技术等。对于外泌体大小、形态、外泌体的浓度、zeta电位等分析也可以使用粒度分析仪。外泌体富集、分离和检测是当前外泌体研究的热点之一。徐州外泌体分离企业
CHO细胞外泌体的分离和表征:CHO细胞是一种普遍用于生物制药蛋白质生产的宿主。CHO细胞中分离外泌体主要采用聚合物的沉淀(PBP)技术从分批培养中分离和富集细胞外泌体囊泡。分离后的外泌体可以通过多种方法来检测和表征分离的囊泡,这些分析包括动态光散射(DLS)和Zeta电位测量、电子显微镜(EM)和外泌体标记物分析、RNA和脂质分析等。根据制造商的指南,使用TEI总外泌体分离试剂盒(Invitrogen)从培养基中分离外泌体。将细胞培养基以2000×g离心30分钟以去除细胞和任何碎片;随后将上清液小心移至离心管管中,加入0.5倍体积的TEI试剂,充分混合并在4°C下孵育过夜。然后将样品在4°C下以10,000×g离心1小时,然后在弃去上清液后,将富含外泌体的颗粒重新悬浮在75μlPBS缓冲液中。然后将样品储存在-20°C下,直到需要进行后续分析。徐州外泌体分离企业外泌体通过它们携带的间质基质组分,在宿主细胞中诱导上皮间质转化等重要的生物学反应。
外泌体来源及其释放途径:外泌体在人体的主要作用是充当局部和全身信号和调节系统。外泌体(直径30-150nm)是较小的血管外囊泡亚群,它的还包括微泡(50nm-1μm)和凋亡小体(50nm-5μm)。外泌体的来源是内体系统。由内膜出芽形成早期核内体,早期内体可以与内吞小泡融合,从而引导它们的货物进行回收、降解或分泌。当早期内体成熟为晚期内体时,在它们成熟为晚期核内体的过程中,囊泡膜向内出芽,导致多泡体(MVB)的产生,其中包含许多腔内囊泡(ILV).在此阶段,MVB可以与溶酶体融合(ILV继续降解)或与质膜融合,导致ILV释放到细胞外空间。这些释放的ILV称为外泌体,包含着许多源自细胞内部的蛋白质、核酸、脂质和多糖。另一种释放机制就是由于质膜向外出芽,从而导致形成所谓的脱落微泡或外泌体。
外泌体分离方法之超速离心法:超速离心基于颗粒的大小(重量)及其在离心力(100,000–110,000×g)下的离心沉降。至于去除的细胞碎片和不需要的颗粒可以通过称为差速离心的几步慢速离心来获得。外泌体的纯化可以采用蔗糖梯度密度离心纯化法:即:在蔗糖梯度(1.13–1.19g/mL)或缓冲液中进行,以实现更高的富集、产量和纯度增加。外泌体分离方法之微流控分离法:微流控分离法主要是在微芯片上进行的,这里我们需要提及的是,微流控分离法法可用于外泌体分离(免疫结合和磁结合、过滤),效率相对较高(约90%)。分离过程中避免对外泌体结构和功能造成影响至关重要。
差速离心法分离外泌体的实验原理:任何外泌体分离方案旨在获得产量合理且不受细胞碎片、细胞器和凋亡小体污染的外泌体群体,理想情况下,不含其他类型的细胞外囊泡、蛋白质及其聚集体。由于大小差异很大,将外泌体与细胞、细胞碎片和大囊泡分离相对容易。巨大的挑战是从小的脱落囊泡中纯化外泌体,因为它们的大小非常相似。通过差速离心分离这些细胞外囊泡既困难又低效。所以需要根据转子的特性和要分离的颗粒的特性,来对离心参数应进行调整。因为离心速度与粒子的旋转半径成正比,所以离心运动加速。粒子的径向坐标随时间t呈指数增长。外泌体分离的过程需要进行多次洗涤和离心。苏州尿液外泌体分离制造商
外泌体携带的小分子物质(如ATP、GTP等)参与细胞生命活动、代谢、细胞生长和分化等生物学进程。徐州外泌体分离企业
外泌体分离方法之密度梯度离心法:这种方法将超速离心机的超速离心与蔗糖密度梯度相结合。具体地说,密度梯度离心用于将外泌体与非囊泡颗粒(例如蛋白质和蛋白质/RNA聚集体)分离。因此,该方法将囊泡与不同密度的颗粒分离。足够的离心时间比较重要,否则如果外泌体部分具有相似的密度,则仍可能在外泌体部分中发现污染颗粒。该结构不会让大于1μm的细胞和其他颗粒进入布线区域。一些较小的颗粒和细胞碎片可以进入微柱区域,但被纳米纤毛排除,形成直径为30-200nm的孔。纤毛结构选择性地捕获外泌体和小细胞外囊泡。徐州外泌体分离企业
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