膜片钳在通道研究中的重要作用用膜片钳技术可以直接观察和分辨单离子通道电流及其开闭时程、区分离子通道的离子选择性、同时可发现新的离子通道及亚型，并能在记录单细胞电流和全细胞电流的基础上进一步计算出细胞膜上的通道数和开放概率，还可以用以研究某些胞内或胞外物质对离子通道开闭及通道电流的影响等。同时用于研究细胞信号的跨膜转导和细胞分泌机制。结合分子克隆和定点突变技术，膜片钳技术可用于离子通道分子结构与生物学功能关系的研究。利用膜片钳技术还可以用于药物在其靶受体上作用位点的分析。如神经元烟碱受体为配体门控性离子通道，膜片钳全细胞记录技术通过记录烟碱诱发电流，可直观地反映出神经元烟碱受体活动的全过程，包括受体与其激动剂和拮抗剂的亲和力，离子通道开放、关闭的动力学特征及受体的失敏等活动。使用膜片钳全细胞记录技术观察拮抗剂对烟碱受体激动剂量效曲线的影响，来确定其作用的动力学特征。然后根据分析拮抗剂对受体失敏的影响，拮抗剂的作用是否有电压依赖性、使用依赖性等特点，可从功能上区分拮抗剂在烟碱受体上的不同作用位点，即判断拮抗剂是作用在受体的激动剂识别位点，离子通道抑或是其它的变构位点上。在细胞膜的电学模型中，膜电容和膜电导构成了一个并联回路。德国细胞膜片钳蛋白质分子水平
1976年德国马普生物物理化学研究所Neher和Sakmann在青蛙肌细胞上用双电极钳制膜电位的同时，记录到ACh启动的单通道离子电流，从而产生了膜片钳技术。1980年Sigworth等在记录电极内施加5-50cmH2O的负压吸引，得到10-100GΩ的高阻封接（Giga-seal），明显降低了记录时的噪声实现了单根电极既钳制膜片电位又记录单通道电流的突破。1981年Hamill和Neher等对该技术进行了改进，引进了膜片游离技术和全细胞记录技术，从而使该技术更趋完善，具有1pA的电流灵敏度、1μm的空间分辨率和10μs的时间分辨率。1983年10月，《Single-ChannelRecording》一书问世，奠定了膜片钳技术的里程碑。Sakmann和Neher也因其杰出的工作和突出贡献，荣获1991年诺贝尔医学和生理学奖。德国高通量全自动膜片钳电生理工具离子通道探索之旅，从选择膜片钳开始！
在膜片钳技术的发展过程中主要形成了五种记录模式，即细胞贴附模式（cell-attachedmode或loose-seal-cellattachedmode）、膜内面向外模式（inside-outmode）、膜外面向外模式（outside-outmode）、常规全细胞模式（conventionalwhole-cellmode）和穿孔膜片模式（perforatedpatchmode）。a.亚细胞水平：细胞贴附模式，可记录通过电极下膜片中通道蛋白的离子电流(红色虚线箭头)。在全细胞膜片钳中，膜片破裂，因此可以记录全细胞的宏观电流，它表示整个细胞的总和电流(蓝色虚线箭头)。b.细胞水平：来自神经元不同部分的全细胞同步记录可确定信号传递的方向。c.神经元网络水平：全细胞记录可以在一个连接神经元的小网络中进行。d.活物水平：可以在执行任务或自由走动的动物大脑中进行全细胞记录。
膜片钳技术的创立取代了电压钳技术，是细胞电生理研究的一个飞跃，使得离子通道的研究，从宏观深入到微观，使昔日的“肉汤生理学(brothphysiology)”与“闪电生理学(lightningphysiology)”在分子水平上结合起来，使人们对膜通道的认识耳目一新。当前，生理学、生物物理学、生物化学、分子生物学和药理学等多种学科正在把膜片钳技术和膜通道蛋白重组技术、同位素示踪技术和光谱技术等非电生理技术结合起来，协同对离子通道进行较全的研究。不少实验室已经将基因工程与膜片钳技术结合起来，把通道蛋白有目的地重组于人工膜中进行研究。设想将合成的通道蛋白分子接种入机体以替换有缺陷和异常的通道的功能而达到的目的。滔博生物TOP-Bright专注基于多种离子通道靶点的化合物体外筛选,服务于全球药企的膜片钳公司,快速获得实验结果,专业团队,7*53小时随时人工在线咨询.在膜电位改变时，在电场的作用下，重新分布导致通道的关闭，同时有电荷移动，称为门控电流。
不同的全自动膜片钳技术所采用的原理如PopulationPatchClamp技术∶同SealChip技术一样，完全摒齐了玻璃电极，而是采用PatchPlate平面电极芯片。该芯片含有多个小室，每个小室中含有很多1-2μm的封接孔。在记录时，每个小室中封接成功的细胞|数目较多，获得的记录是这些细胞通道电流的平均值。因此，不同小室其通道电流的一致性非常好，变异系数很小。美国Axon（MDS）公司采用这一技术研发出了全自动高通量的lonWorksQuattro系统，成为药物初期筛选的金标准滔博生物TOP-Bright专注基于多种离子通道靶点的化合物体外筛选,服务于全球药企的膜片钳公司,快速获得实验结果,专业团队,7*39小时随时人工在线咨询.现代膜片钳技术是在电压钳技术的基础上发展起来的。日本可升级膜片钳离子电流
膜电导测定的依据是电学中的欧姆定律。德国细胞膜片钳蛋白质分子水平
膜片钳技术是一种细胞内记录技术，是研究离子通道活动的蕞佳工具，也是应用蕞很广的电生理技术之一。该技术通过施加负压将微玻管电极（膜片电极或膜片吸管）的前列与细胞膜紧密接触，形成GΩ以上的阻抗，使电极开口处的细胞膜与其周围膜在电学上绝缘。被孤立的小膜片面积为μm量级，内中只有少数离子通道。玻璃微电极中含有一根浸入电解溶液中的导线，用于传导离子。在此基础上对该膜片施行电压钳位（即保持跨膜电压恒定），如果单个离子通道被包含在膜片内，则可对此膜片上的离子通道的电流进行监测记录。通过观测单个通道开放和关闭的电流变化，可直接得到各种离子通道开放的电流幅值分布、开放几率、开放寿命分布等功能参量，并分析它们与膜电位、离子浓度等之间的关系。还可把吸管吸附的膜片从细胞膜上分离出来，以膜的外侧向外或膜的内侧向外等方式进行实验研究。这种技术对小细胞的电压钳位、改变膜内外溶液成分以及施加药物都很方便。德国细胞膜片钳蛋白质分子水平
