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    8．取剩余裂解液测定LacZ的活性，其读数作为内标用以矫正荧光素酶的读数。9.用矫正后的读数作图，分析数据。注：荧光素见光易氧化，已稀释未用的荧光素应丢弃。注意事项：1．荧光素酶检测试剂需在15-25℃条件下预平衡后再进行反应，而后依据具体条件进行自动或手动检测。当用液闪计数仪时，加入荧光素酶检测试剂后立即轻轻混匀。2．如果细胞裂解后不能立即对提取物进行检测，样品可以在冰上保存大约5h，在-70℃可保存数月。不要反复冻融以避免酶活性的降低。3．利用上述方法检测冷的样品时，其信号强度将下降5-15%。4．在荧光素酶活性较高的情况下，导致信号超出线性范围（信号溢出）可用裂解液将样品进行稀释。5．不要储存稀释过的样品。如果必须保存，要在稀释的样品中加入BSA至终浓度为，这样可以保持样品的稳定性。6．一些荧光仪在进行检测前需要1-2s的稳定，因此建议在开机后过一段时间再进行检测操作。荧光素酶报告基因检测主要有哪些用途？a.启动子结构分析，将启动子区域序列（通常2k左右）进行分段截短，或对特定位点进行突变，再分别构建入luciferase报告载体，检测其启动子活性。b.启动子SNP分析，一些基因的启动子区域存在单核苷酸多态性。D-荧光素钾盐如何选择合作公司？无锡荧光素酶编码基因D-荧光素钾盐公司

    并实现了在非常高通量的应用中使用报告基因检测。[1]随着UltraGlo™萤光素酶的发展，现在已经实现了“加样-读数”的ATP检测方法。ATP是细胞健康的重要指标，这使得CellTiter-Glo®能有效测定细胞活力，尤其是在高通量应用中。该检测原理还促进了其它ATP检测平台的诞生，尤其是用于研究ATP酶（如激酶）的Kinase-Glo®（2004年）和ADP-Glo™（2009年）酶检测系统。[1]2003Caspase-Glo®3/7检测除了可以利用萤火虫萤光素酶反应测定样品中萤光素酶或ATP的含量外，还可以检测底物（luciferin）浓度的变化。通过将luciferin与可被不同酶类识别并产生反应的保护基团偶联，能对这些酶进行灵敏的“加样-读数”检测，如半胱天冬酶（caspase）和其它蛋白酶。[1]2007One-Glo™萤光素酶检测系统随着对萤火虫萤光素酶化学反应的进一步了解以及Promega生物学家和化学家团队的建立，一种改进的luciferin面世，能更好地用于典型的报告基因检测应用。这种新的底物——fluoroluciferin，是新型底物开发的一个早期实例。[1]2012NanoLuc®萤光素酶基于定向进化和新型底物开发方面的经验，研究人员从虾的萤光素酶改造设计出一种新型萤光素酶报告基因，即NanoLuc®萤光素酶。d荧光素钾盐D-荧光素钾盐的合作平台有哪些？

    而发出不同颜色的荧光。萤火虫有2000多种，而叩甲总科（包括萤火虫、叩头虫和相关昆虫）则有更多，因此它们的荧光素酶对于分子系统学研究很有用。目前研究得更透彻的荧光素酶是来自Photinini族萤火虫中的北美萤火虫（Photinuspyralis）。荧光素酶报告基因（Luc）是指以荧光素(luciferin)为底物来检测萤火虫荧光素酶(fireflyluciferase)活性的一种报告系统。荧光素酶可以催化luciferin氧化oxyluciferin，在luciferin氧化的过程中，会发出生物荧光(bioluminescence)。荧光素酶是能够催化不同底物氧化发光的一类酶，哺乳细胞无内源性荧光素酶。更常用的荧光素酶有细菌荧光素酶、萤火虫荧光素酶和Renilla荧光素酶。细菌荧光素酶对热敏感，因此在哺乳细胞的应用中受到限制。萤火虫荧光素酶灵敏度高，检测线性范围宽达7～8个数量级，是更常用于哺乳细胞的报道基因，用荧光比色计即可检测酶活性，因而适用于高通量筛选。随着具有膜通透性和光裂解作用的萤火虫荧光素酶的应用，无需裂解细胞即可检测酶活性。Renilla荧光素酶催化肠腔（coelenterazine）氧化，产物可透过生物膜，可能是更适用于活细胞的报告分子。将荧光素酶报告基因载体转染到细胞中。

    我们将与LgBiT具有极强亲和作用的。HiBiT作为一种易于检测且具有高灵敏度的蛋白质标签，具有多种功能，例如当与基于CRIPSR的标签一起使用时，可以创建内源性报告基因模型。[1]2020Lumit™技术随着NanoBiT®技术的发展，人们认识到可以利用该系统通过结合免疫测定的组分检测多种分析物。由此产生的平台（现称为“Lumit”）提供了具有高灵敏度的简化免疫检测法。萤光素酶（英语：Luciferase）是自然界中能够产生生物发光的酶的统称，其中**有代表性的是一种学名为Photinuspyralis的萤火虫体内的萤光素酶。在相应化学反应中，荧光的产生是来自于萤光素的氧化，有些情况下反应体系中也包括三磷酸腺苷（ATP）。没有萤光素酶的情况下，萤光素与氧气反应的速率非常慢，而钙离子的存在常常可以进一步加速反应（与肌肉收缩的情况相似）。萤光生成反应通常分为以下两步：萤光素+ATP→萤光素化腺苷酸（luciferyladenylate）+PPi萤光素化腺苷酸+O2→氧萤光素+AMP+光这一反应非常节省能量，几乎所有输入反应的能量都被转化为光。与之形成鲜明对比的是人类使用的白炽灯，只有约10%的能量被转化为光，剩余的能量都变为热能而被浪费。萤光素或萤光素酶不是特定的分子。D-荧光素钾盐的活题成像技术。

    室温培育30min后加入细胞孔板中，置于培养箱常规培养。2)单克隆细胞筛选转染24h后胰酶消化细胞并按1∶6比例接种到新6孔板中，同时加入实验确定的浓度G418，随后每2d更换一次培养基并维持G418筛选直至单细胞抗性克隆的出现。分别挑选单一抗性克隆至96孔板，待其逐渐增殖后转入24孔板中继续传代培养。3)荧光素酶活性鉴定阳性克隆单一抗性克隆传代至第五代时用LuciferaseAs-sayAystem检测荧光素酶活性。检测时，各克隆按1×105个/孔接种到24孔板，24h后细胞裂解液裂解12000rpm，4℃离心10min，收集裂解物，取上清10μl加入96孔白板中，向每孔加入50μl荧光素酶96microplateluminometer连续读底物，停留2s后，取10s的荧光值（RLU），每个克隆设3个复孔，保留RLU值高的细胞克隆继续传代培养，再过5代后进行荧光素酶活性检测。保留RLU值维持较高的克隆直至第30代，荧光素酶活性更高的几个克隆MCF-7-luc即为阳性克隆.各不同数量细胞克隆的荧光值检测7-luc阳性克隆细胞按细胞数将筛出的MCF-4×104、2×104、1×104、5000、2500、1250、625、312和156分别接种到96孔黑板中，另外一组只有细胞，一组只有培养基作对照，设置2个复孔，常规培去上清并用PBS洗两次。荧光素酶作用下的D-荧光素钾盐。盐城ATPD-荧光素钾盐活题成像原理

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    是新型底物开发的一个早期实例。[1]2012NanoLuc®萤光素酶基于定向进化和新型底物开发方面的经验，研究人员从虾的萤光素酶改造设计出一种新型萤光素酶报告基因，即NanoLuc®萤光素酶。这是一种小分子（19kDa）单体酶，具有独特的底物，其灵敏度比已具备高灵敏度的萤火虫或海肾萤光素酶系统高约100倍。这种新型的报告基因有着范围广的应用前景，为进一步的技术开发奠定了基础。[1]2015NanoBRET™技术NanoLuc®的小体积和非常明亮的光输出是作为蛋白质标签的理想特征。这些特征还很适合作为生物发光共振能量转移（BRET）的供体。一项针对各种能量受体荧光基团的深入研究发现，红色光谱中的可选择性有助于消除与BRET测定相关的一些挑战。可将这些荧光基团添加到蛋白质配基等分子中以测量靶蛋白的结合，或与HaloTag®配基耦联以进行活细胞中蛋白质：蛋白质相互作用的检测。[1]2016NanoBiT®技术随着NanoLuc®的诞生，Promega的科学家努力将该报告基因改造为多亚基系统，即“NanoLuc®BinaryTechnology”或NanoBiT®。该系统由两部分组成：11个氨基酸的小标签和一个更大，更精细的NanoLuc®亚基，LgBiT。这两部分结构互补结合。无锡荧光素酶编码基因D-荧光素钾盐公司