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    可运用荧光素酶报告系统分析其相对活性。c.验证特定转录因子同其调控序列的作用，将该序列（通常为启动子区域）插入报告基因载体，同时在实验细胞***转过表达该转录因子，可分析转录因子过表达是否提高荧光素酶活性。d.可以分析信号通路是否***，将该信号通路的下游响应原件序列构建入报告基因载体，在不同上游信号条件下，荧光素酶活性**了通路的下游响应。例如在GPCR研究中，将cAMPresponseelement（CRE）载入报告基因载体，构建稳定表达细胞株后，可以用于分析GPRC的***与6b7a976f-99ae-4c48-8159-4bd筛选。又如，将HIF1α的响应原件hypoxia-responsiveelement(HRE)插入luciferase报告载体构建稳转细胞株，可以用于低氧相关通路的研究。e.验证microRNA的靶序列，将待测的3’UTR序列插入报告基因载体，再共转入该microRNA，如果荧光素酶活性下降，则提示为其靶序列。Q：在[信诺金达]做荧光素酶报告基因检测，需要提供什么？实验结果包括哪些？您需要提供：1.基因序列或模板，需提供详细的转录因子、目的基因或microRNA信息；2.实验细胞，[信诺金达]默认为使用293T细胞，实验结束后，[信诺金达]会为您提供实验流程及完整报告一份，包括实验原始数据、图片、分析结果等。D-荧光素钾盐运输条件是4℃冰袋运输。盐城荧光素酶编码基因D-荧光素钾盐供应商

    并实现了在非常高通量的应用中使用报告基因检测。[1]随着UltraGlo™萤光素酶的发展，现在已经实现了“加样-读数”的ATP检测方法。ATP是细胞健康的重要指标，这使得CellTiter-Glo®能有效测定细胞活力，尤其是在高通量应用中。该检测原理还促进了其它ATP检测平台的诞生，尤其是用于研究ATP酶（如激酶）的Kinase-Glo®（2004年）和ADP-Glo™（2009年）酶检测系统。[1]2003Caspase-Glo®3/7检测除了可以利用萤火虫萤光素酶反应测定样品中萤光素酶或ATP的含量外，还可以检测底物（luciferin）浓度的变化。通过将luciferin与可被不同酶类识别并产生反应的保护基团偶联，能对这些酶进行灵敏的“加样-读数”检测，如半胱天冬酶（caspase）和其它蛋白酶。[1]2007One-Glo™萤光素酶检测系统随着对萤火虫萤光素酶化学反应的进一步了解以及Promega生物学家和化学家团队的建立，一种改进的luciferin面世，能更好地用于典型的报告基因检测应用。这种新的底物——fluoroluciferin，是新型底物开发的一个早期实例。[1]2012NanoLuc®萤光素酶基于定向进化和新型底物开发方面的经验，研究人员从虾的萤光素酶改造设计出一种新型萤光素酶报告基因，即NanoLuc®萤光素酶。泰州ATPD-荧光素钾盐试剂D-荧光素钾盐测试怎么样？

    每孔加入100μl养24h后，Luciferin使其终浓度为150μg/ml，PBS，再加入D-立即用活题成像系统检测，分析发光强度与细胞数之间的相关性。4)细胞生长曲线绘制MCF7-luc细胞和作为对照取表达荧光素酶的MCF-7细胞，接种于24孔板，接种密度为2×104/孔。细胞接种后1～7d，每天胰蛋白酶消化其中3孔细胞，用细胞计数仪测定细胞数。以细胞生长天数为横坐标，细胞数目为纵坐标，分别绘制两种细胞生长曲线。二．动物模型BLAB/c裸鼠皮下移植瘤模型的建立BLAB/cnu/nu裸鼠，4～5周龄，体重（15±2）g，雌雄各3只。取对数生长期的MCF-7用PBS重悬为2．5×10/ml悬液，每只裸鼠左右背侧近腋部皮下接种100μl，共接种6只。接种后第5d采用德国BERTHOLD公司的活题成像系统检测信号强度。以后每5d观测一连续观测30d。观测前每只裸鼠戊巴比妥钠麻醉（计量为：35mg/kg体重），按150mg/kg体重的量腹腔注射luciferin（invivograde），10min后，进行活题成像观察皮下肿大的瘤的生长情况，定量分析各时间点的荧光值。绘制肿大的瘤皮下生长曲线.MCF-7-luc细胞裸鼠皮下移植瘤的病理形态学观察MCF-7-luc细胞裸鼠皮下接种后25d，脱颈处死小鼠，取肿大的瘤组织，制成石蜡切片，切片厚度为3μm。

    荧光素酶(Luciferase)是自然界中能够催化荧光素产生生物发光的酶的统称，其中**有7a70d2e3-5dda-4f49-84be-c6的是来自萤火虫体内(Firefly)和海肾(Renilla)体内的两类萤光素酶，分别命名为F-Luciferase和R-Luciferase，同时近年来研究得较多的来源于高斯氏菌的高斯荧光素酶（Gaussluciferase）。荧光素酶可以催化luciferin氧化成oxyluciferin，在luciferin氧化的过程中，会发出生物荧光(bioluminescence)，可通过荧光测定仪设备测定luciferin氧化过程中释放的生物荧光，常应用于启动子转录活性调控及miRNA靶基因验证等方向研究。萤火虫萤光素酶**通用和**常见的报告基因是北美萤火虫photinuspyralis的荧光素酶，该蛋白质不需要翻译后修饰即可获得酶活性。高浓度（体内）甚至没有毒性，可用于原核和真核细胞。Amplite™萤光素酶报告基因检测试剂盒（12518）使用无DTT**配方来定量活细胞和细胞提取物中的萤光素酶活性。该测定基于萤火虫荧光素酶，萤火虫荧光素酶是一种单体的61kD酶，可催化荧光素的两步氧化，在560nm处产生光。Amplite™萤光素酶报告基因检测试剂盒特点：具有优化的“混合读取”测定规程，可与HTS液体处理仪器兼容具有高灵敏度。D-荧光素钾盐使用的是什么技术？

    常见的荧光素酶有两种，分别是萤火虫荧光素酶（fireflyluciferase，编码基因是luc）和海肾荧光素酶（Renillaluciferase，编码基因是Rluc），前者的底物是D-Luciferin，后者的底物是Coelenterazine。它们共同的作用原理是在ATP和荧光素酶的催化作用下，底物被氧化发光（不同底物光的颜色和波长不同），当底物过量时，产生的光量子数与荧光素酶的浓度呈正相关性。***成像技术（opticalinvivoimaging）目前主要采用生物发光（bioluminescence）与荧光（fluorescence）两种技术，生物发光法是基于荧光素酶能催化底物（D-Luciferin或Coelenterazine）化学发光的原理，将体外能稳定表达荧光素酶的细胞株植入动物体内，与后期注射入体内的底物发生反应，利用光学系统检测光强度，间接反映出细胞数量的变化或细胞的定位。这项技术已被广泛应用于多个领域常用的有**或疾病动物模型的建立，并可用于病毒学研究、siRNA研究、干细胞研究、蛋白质相互作用研究等。以下主要介绍D-Luciferin（D荧光素）的分类：D-Luciferin：有三种，分别是D-Luciferin,SodiumSalt/D荧光素钠盐、D-Luciferin,PotassiumSalt/D-荧光素钾盐和D-LuciferinFirefly,freeacid/D-萤火虫荧光素。做D-荧光素钾盐测试价格是多少。扬州荧光素钠盐D-荧光素钾盐活题成像

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    而是对于所有能够产生萤光的底物和其对应的酶的统称，虽然它们各不相同。不同的能够控制发光的生物体用不同的萤光素酶来催化不同的发光反应。**为人所知的发光生物是萤火虫，而其所采用不同的萤光素酶与其他发光生物如荧光菇（发光类脐菇，Omphalotusolearius）或许多海洋生物都不相同。在萤火虫中，发光反应所需的氧气是从被称为腹部气管（abdominaltrachea）的管道中输入。一些生物，如叩头虫，含有多种不同的萤光素酶，能够催化同一萤光素底物，而发出不同颜色的萤光。萤火虫有2000多种，而叩甲总科（包括萤火虫、叩头虫和相关昆虫）则有更多，因此它们的萤光素酶对于分子系统学研究很有用。如今研究得**透彻的萤光素酶是来自Photinini族萤火虫中的北美萤火虫（Photinuspyralis）。[1]萤光素酶可以在实验室中用基因工程的方法生成，并被用于多种不同的实验。萤光素酶的基因可以被合成并插入到生物体中或转染到细胞中。研究者利用基因工程已经使得小鼠、家蚕、马铃薯等一些生物可以合成萤光素酶。间接体外成像是一种强大的研究手段，可以对整个动物体中的细胞群落进行分析：将不同类型的细胞（骨髓干细胞、T细胞等）标记上（即表达）萤光素酶。盐城荧光素酶编码基因D-荧光素钾盐供应商

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